Химия наследственности. Нуклеиновые кислоты. ДНК. РНК. Репликация ДНК и передача наследственной информации

последовательность аминокислот в пептидах. Каждая аминокислота кодируется

сочетанием трех нуклеотидов, в этом случае образуется 64 триплета, из

которых 61 кодируют аминокислоты, а 3 являются бессмысленными и выполняют

функцию знаков препинания (АТТ, АЦТ, АТЦ). Шифрование одной аминокислоты

несколькими триплетами получило название как вырожденность триплетного

кода. Важными свойствами генетического кода является его специфичность

(каждый триплет способен кодировать только одну аминокислоту),

универсальность (свидетельствует о единстве происхождения всего живого на

Земле) и неперекрываемость кодонов при считывании.

ДНК выполняет следующие функции:

V хранение наследственной информации происходит с помощью гистонов.

Молекула ДНК сворачивается, образуя вначале нуклеосому, а после

гетерохроматин, из которого состоят хромосомы;

V передача наследственного материала происходит путем репликации ДНК;

V реализация наследственной информации в процессе синтеза белка.

5. РНК

5.1. Состав РНК

Первые сведения о нуклеотидном составе РНК относились к препаратам,

представляющим собой смеси клеточных РНК (рибосомных, информационных и

транспортных) и называемым обычно суммарной фракцией РНК. Правила Чаргаффа

в этом случае не соблюдаются, хотя определенное соответствие между

содержанием гуанина и цитозина, а также аденина и урацила все же имеет

место.

Данные, полученные в последние годы при анализе индивидуальных РНК,

показывают, что и на них правила Чаргаффа не распространяются. Однако

различия в содержании аденина и урацила, а также гуанина и цитозина для

большинства РНК невелики и что, следовательно, тенденция к выполнению

указанных правил все же наблюдается. Этот факт объясняется особенностями

макроструктуры РНК.

Характерными структурными элементами некоторых РНК являются минорные

основания. Соответствующие им нуклеотидные остатки обычно входят в состав

транспортных и некоторых других РНК в очень небольших количествах, поэтому

определение полного нуклеотидного состава таких РНК представляет собой

иногда весьма сложную задачу.

5.2. Макромолекулярная структура РНК

Химически РНК очень похожа на ДНК. Оба вещества - это линейные

полимеры нуклеотидов. Каждый мономер - нуклеотид - представляет собой

фосфорилированный N-гликозид, построенный из остатка пятиуглеродного сахара

- пентозы, несущего фосфатную группу на гидроксильной группе пятого

углеродного атома (сложноэфирная связь) и азотистое основание при первом

углеродном атоме (N-гликозидная связь). Главное химическое различие между

ДНК и РНК состоит в том, что сахарный остаток мономера РНК - это рибоза, а

мономера ДНК - дезоксирибоза, являющаяся производным рибозы, в котором

отсутствует гидроксильная группа при втором углеродном атоме (рис. 4).

[pic]

Рис.4. Химические формулы остатков одного из рибонуклеотидов – уридиловой

кислоты (U) и гомологичного ему

дезоксирибонуклеотида тимидиловой кислоты (dT)

Азотистых оснований в РНК четыре вида: два пуриновых - аденин (А) и

гуанин (G) -и два пиримидиновых - цитозин (С) и урацил (U)

Мономеры - рибонуклеотиды РНК - образуют полимерную цепь посредством

формирования фосфодиэфирных мостиков между сахарными остатками (между пятым

и третьим атомами углерода пентозы). Таким образом, полимерная цепь РНК

может быть представлена как линейный сахаро-фосфатный остов с азотистыми

основаниями в качестве боковых групп.

Впервые специфическая пространственная структура РНК была

продемонстрирована при расшифровке атомной структуры одной из т-РНК в 1974

г. (рис. 5). Сворачивание полимерной цепи тРНК, состоящей из 76

нуклеотидных мономеров, приводит к формированию очень компактного

глобулярного ядра, из которого под прямым углом торчат два выступа. Они

представляют собой короткие двойные спирали по типу ДНК, но организованные

за счет взаимодействия участков одной и той же цепи РНК. Один из выступов

является акцептором аминокислоты и участвует в синтезе полипептидной цепи

белка на рибосоме, а другой предназначен для комплементарного

взаимодействия с кодирующим триплетом (кодоном) м-РНК в той же

рибосоме. Только такая структура способна специфически взаимодействовать с

белком-ферментом, навешивающим аминокислоту на т-РНК, и с рибосомой в

процессе трансляции, то есть специфически "узнаваться" ими.

[pic]

Рис. 5. Атомная (слева) и скелетная (справа) модели фенилаланиновой т-

РНК дрожжей

Изучение изолированных рибосомных РНК дало следующий разительный

пример формирования компактных специфических структур из еще более длинных

линейных полимеров этого типа. Рибосома состоит из двух неравных частей -

большой и малой рибосомных субчастиц (субъединиц). Каждая субчастица

построена из одной высокополимерной РНК и целого ряда разнообразных

рибосомных белков. Длина цепей рибосомных РНК весьма значительна: так, РНК

малой субчастицы бактериальной рибосомы содержит более 1500 нуклеотидов, а

РНК большой субчастицы - около 3000 нуклеотидов. У млекопитающих, включая

человека, эти РНК еще больше - около 1900 нуклеотидов и более 5000

нуклеотидов в малой и большой субчастицах соответственно.

5.3. Мультифункциональность РНК

Суммирование и обзор знаний о функциях РНК позволяют говорить о

необыкновенной многофункциональности этого полимера в живой природе. Можно

дать следующий список основных известных функций РНК.

• Генетическая репликативная функция: структурная возможность

копирования (репликации) линейных последовательностей нуклеотидов через

комплементарные последовательности. Функция реализуется при вирусных

инфекциях и аналогична главной функции ДНК в жизнедеятельности клеточных

организмов - редупликации генетического материала.

• Кодирующая функция: программирование белкового синтеза линейными

последовательностями нуклеотидов. Это та же функция, что и у ДНК. И в ДНК,

и в РНК одни и те же триплеты нуклеотидов кодируют 20 аминокислот белков, и

последовательность триплетов в цепи нуклеиновой кислоты есть программа для

последовательной расстановки 20 видов аминокислот в полипептидной цепи

белка.

• Структурообразующая функция: формирование уникальных трехмерных

структур. Компактно свернутые молекулы малых РНК принципиально подобны

трехмерным структурам глобулярных белков, а более длинные молекулы РНК

могут образовывать и более крупные биологические частицы или их ядра.

• Функция узнавания: высокоспецифические пространственные

взаимодействия с другими макромолекулами (в том числе белками и другими

РНК) и с малыми лигандами. Эта функция, пожалуй, главная у белков. Она

основана на способности полимера сворачиваться уникальным образом и

формировать специфические трехмерные структуры. Функция узнавания является

базой специфического катализа.

• Каталитическая функция: специфический катализ химических реакций

рибозимами. Данная функция аналогична энзиматической функции белков-

ферментов.

В целом РНК предстает перед нами столь удивительным полимером, что,

казалось бы, ни времени эволюции Вселенной, ни интеллекта Творца не должно

было бы хватить на ее изобретение. Как можно было видеть, РНК способна

выполнять функции обоих принципиально важных для жизни полимеров - ДНК и

белков. Неудивительно, что перед наукой и встал вопрос: а не могло ли

возникновение и самодостаточное существование мира РНК предшествовать

появлению жизни в ее современной ДНК-белковой форме?

5.4. Выделение рибонуклеиновых кислот

Методы, используемые для экстракции рибонуклеиновых кислот, частично

зависят от природы органа или организма. В одном из ранних методов,

использованном Левиным, к густому тесту из дрожжей добавляли щелочь, смесь

перемешивали с пикриновой кислотой, фильтровали и нуклеиновую кислоту

осаждали из фильтрата добавлением соляной кислоты. Такая довольно жесткая

обработка приводила к тому, что полученная нуклеиновая кислота значительно

отличалась от «нативной» рибонуклеиновой кислоты. Для выделения

рибонуклеиновых кислот, приближающихся по структуре к нуклеиновым кислотам

живой клетки, необходимо избегать применения жестких условий (рН,

температура) в то же время необходимо, насколько возможно, затормозить

ферментативный распад. Широко применялась экстракция рибонуклеопротеидов

изотоническим раствором хлористого натрия. Белки от нуклеиновых кислот

могут быть отщеплены различными методами, такими, как обработка смесями

хлороформа с октиловым спиртом, додецилсульфатом натрия, нитратом стронция

или спиртом, а также расщепление белковой фракции трипсином. И снова

эффективность каждого метода определяется природой рибонуклеопротеида. Для

инактивации ферментов в процессе экстракции полезно применение хлоргидрата

гуанидина (денатурирующего агента); для выделения рибонуклеиновых кислот и

нативных рибонуклеопротеидов из дрожжей был применен метод, использующий

адсорбцию рибонуклеаз на бентоните после предварительной обработки ионами

цинка.

Особые преимущества имеет выделение рибонуклеиновых кислот из

гомогенатов тканей млекопитающих, микроорганизмов и вирусов экстракцией

фенолом и водой при комнатной температуре, так как при этом белки и

дезоксирибонуклеиновые кислоты выпадают в осадок, активность рибонуклеазы

подавляется и высокополимерные продукты могут быть получены с хорошими

выходами. Прямая экстракция дрожжей водным раствором фенола была применена

для препаративного получения транспортных РНК.

5.5. Фракционирование

Помимо ряда вирусных нуклеиновых кислот, большинство выделенных

полирибонуклеотидов, бесспорно, представляют собой сложные смеси,

содержащие полимеры с различной длиной цепи, нуклеотидной

последовательностью и составом оснований (присутствие или отсутствие

«минорных» оснований). Существует ряд приемов для частичного

фракционирования, однако, пока не разработаны удовлетворительные методы

характеристики, трудно определить степень чистоты или гомогенности

рибонуклеиновых кислот. В основу оценки чистоты транспортных РНК, этих

сравнительно низкомолекулярных полирибонуклеотидов, может быть положена их

ферментативная реакция с аминокислотами (через аминоациладенилаты), что,

конечно, позволяет оценить и их биохимическую однородность.

Методы фракционирования включают осаждение нейтральными солями,

электрофорез, хроматографию на фосфате кальция и осаждение

днгидрострептомицином. Недавно для фракционирования рибонуклеиновых кислот

была использована фракционная диссоциация комплексов нуклеиновая кислота —

гистон, примененная ранее к дезоксинуклеиновым кислотам. Во всех фракциях

отношение 6-амино- к 6-кетонуклеозидам было близко к единице. В некоторой

степени фракционирование происходит при экстракции фенолом, возможно как

результат дифференциального связывания нуклеиновых кислот с белками.

Анионообменные целлюлозы, такие как ЭКТЕОЛА и ДЭАЭ, широко применяются в

настоящее время для фракционирования не только рибонуклеиновых кислот,

включая специфичные для аминокислот транспортные РНК, но и

рибонуклеопротеидов и даже вирусных препаратов. Для элюирования обычно

используют растворы нейтральных или близких к нейтральным солеи.

Поразительной особенностью метода является способность этих ионообменников

к разделению очень широкого спектра веществ, начиная от изомеров

мононуклеотидов и олигонуклеотидов с различной длиной цепи или различного

состава и кончая полинуклеотидами чрезвычайно высокого молекулярного веса.

Опубликовано сообщение о разделении на колонках из ДЭАЭ-декстрана РНК,

меченной валином, от немеченой акцепторной РНК. Для фракционирования

рибонуклеиновых кислот были также применены модифицированные ионообменные

целлюлозы, в которых к целлюлозе с помощью эпихлоргидрина присоединены

нуклеозиды (вместо триэтаноламина), особенно аденозин и гуанозин. Подобное

использование ЭКТЕОЛА-целлюлозы для фракционирования или выделения

информационной РНК, связанной в данный момент с ДНК, основано на

способности к специфическому образованию водородных связей: ЭКТЕОЛА

связывает денатурированную ДНК данного организма (для элюирования ДНК

необходим растворитель чрезвычайно высокой ионной силы), а информационная

РНК элюируется растворами понижающейся ионной силы. Посредством

хроматографии на трет-аминоалкилированном крахмале транспортная

рибонуклеиновая кислота была разделена на фракции на основании повышенного

сродства к тирозину и лейцину. Хроматография на оксиапатите дает хорошее

разделение рибонуклеиновых кислот, специфичных для валина и фенилаланина.

В другом методе, имеющем значительную потенциальную ценность,

используется поперечно сшитый полидиазостирол, полученный в результате

реакции полиаминостирола с азотистой кислотой; метод основан на

наблюдениях, что соединения дназония легко реагируют с некоторыми

аминокислотами с образованием ковалентно связанных производных. В пределах

рН от 7 до 8,5 быстро реагируют только тирозин и гистидин. Препараты

транспортных РНК, полностью этерифицированные аминокислотами, встряхивали с

нерастворимым полидиазостиролом, который реагировал только с нуклеиновыми

кислотами, меченными тирозином и гистидином.

[pic]

Дальнейшая очистка достигалась повторной этерификацией тирозином при

использовании очищенного тирозин-активнрующего фермента и повторной

обработкой полидиазостиролом. С неэтерифицированной специфичной к гистидину

рибонуклеиновой кислотой реакции не происходило, и она оставалась в

растворе, в то время как специфичная к тирозину нуклеиновая кислота

освобождалась, как и прежде, при обработке щелочью в мягких условиях. Обе

фракции получены почти чистыми в отношении их аминокислотоакцепторной

специфичности. Предварительные наблюдения показали, что специфичная к

валину рибонуклеиновая кислота, вполне вероятно, может быть этерифицирована

дипептидом тирозилвалином.

6. ПРИРОДА МЕЖНУКЛЕОТИДНЫХ СВЯЗЕЙ

Работы по определению способа соединения нуклеотидов в полимерных

молекулах НК были успешно завершены в начале 50-х годов сразу после того,

как была установлена структура нуклеотидов и изучены некоторые свойства их

производных (главным образом эфиров). К этому же времени были разработаны

методы выделения и очистки ДНК и РНК, так что исследование природы

межмономерных связей проводилось с использованием чистых, хотя и сильно

деградированных препаратов НК.

Первые сведения о типе межмономерной, или, как ее принято называть,

межнуклеотидной связи были получены с помощью потенциометрического

титрования. Эти сведения свидетельствовали о наличие как в РНК, так и в ДНК

только одной гидроксильной группы у каждой фосфатной группы. На основании

этого было сделано заключение, что НК содержит структурную единицу

дизамещенной фосфорной кислоты.

Естественно было предположить, что фосфатные остатки «сшивают»

нуклеозиды за счет двух своих гидроксилов, а один остается свободным.

Оставалось выяснить, какие части нуклеозидных фрагментов участвуют в

образовании связи с фосфатными группами.

Поскольку НК могут быть дезаминированы действием азотистой кислоты,

очевидно, что аминогруппы пиримидиновых и пуриновых оснований не принимают

Страницы: 1, 2, 3, 4